Arrecifes coralinos mesofóticos: descubriendo aspectos clave de la vida coralina en las zonas del crepúsculo Viviana I. Quiroga, Esteban Góngora, Fanny L. González, Trigal Magala Velásquez, Ana María Galeano, Daniel Alfredo Sánchez, Juan Armando Sánchez Fotografía: Juan Armando Sánchez Arrecifes coralinos mesofóticos: descubriendo aspectos clave de la vida coralina en las zonas del crepúsculo Viviana I. Quiroga Bióloga, estudiante de maestría en Ciencias Biológicas en la Universidad de los Andes vi.quiroga54@uniandes.edu.co Esteban Góngora Estudiante de Biología en la Universidad de los Andes e.gongora1051@uniandes.edu.co Fanny L. González Bióloga, estudiante de maestría en Ciencias Biológicas en la Universidad de los Andes fl.gonzalez10@uniandes.edu.co Trigal Magala Velásquez Bióloga, estudiante de maestría en Ciencias Biológicas en la Universidad de los Andes tm.velasquez10@uniandes.edu.co Se llama comúnmente “zona del crepúsculo” a aquella porción marina de los arrecifes coralinos a los que llega menos del 1% de la luz que incide sobre la superficie del mar (figura 1). Su relieve tiene generalmente una fuerte pendiente y se encuentra entre los 30 y 200 m de profundidad. Dado que la exploración con buceo SCUBA se realiza por encima de los 30 m, y la exploración de profundidad, por debajo de los 200 m, esta zona del mar es, curiosamente una de las menos exploradas del planeta. ¿QUÉ SON LOS ARRECIFES CORALINOS MESOFÓTICOS? Los arrecifes coralinos mesofóticos (MCE, por sus siglas en inglés) constituyen comunidades arrecifales de profundidad ubicadas entre 30 y 200 m de la zona fótica (donde penetra la luz) [1]. Se caracterizan por ser una extensión directa de los ecosistemas arrecifales de aguas someras y es- Ana María Galeano Estudiante de Biología en la Universidad de los Andes am.galeano262@uniandes.edu.co Daniel Alfredo Sánchez Biólogo, estudiante de maestría en Ciencias Biológicas en la Universidad de los Andes da.sanchez3247@uniandes.edu.co Juan Armando Sánchez Ph. D., profesor titular del Departamento de Ciencias Biológicas de la Universidad de los Andes juansanc@uniandes.edu.co Figura 1. Un tiburón de arrecife (Carcharhinus perezi) se divisa, con luz natural, a 65 m de profundidad desde el arrecife mesofótico de Burbujas, en los bancos de Salmedina, Cartagena Fotografía: Julio Andrade 44 Hipótesis, Apuntes científicos uniandinos, núm. 18, 2015 tán constituidos por corales escleractínios zooxantelados (figura 2), corales azooxantelados, macroalgas, esponjas y una amplia diversidad de microorganismos [2]. En comparación con los arrecifes someros, los MCE presentan una menor diversidad, en términos de composición de especies, pero comúnmente tienen mayores porcentajes de cobertura coralina (40-60%), siendo esta aproximadamente de 20% en las profundidades someras [1]. El factor abiótico limitante en los MCE es la baja disponibilidad de luz [3, 4], lo cual ha causado la evolución de adaptaciones morfológicas, el desarrollo de estrategias ecológicas de fotoaclimatación y aspectos intrínsecos del ciclo de vida de sus especies, que les han conferido éxito evolutivo a lo largo del tiempo [1, 5, 6]. Uno de los principales aspectos por los cuales se les ha conferido gran importancia a los MCE está relacionado con la denominada “hipótesis de los arrecifes de profundidad como refugio” (DRRH, por sus siglas en Inglés), propuesta por Glynn [7], y fundamentada en considerar que los MCE se ven menos impactados por eventos de estrés térmico que los arrecifes someros. Según la hipótesis DRRH, los arrecifes de profundidad representan un refugio vital de hábitats para un sinnúmero de peces, poblaciones que son fuentes y receptoras de larvas coralinas de especies someras (lo que significa que hay conectividad ecológica) e interacciones físicas y biológicas de la estructura trófica [3, 5, 8]. Adicionalmente, se ha observado que las amenazas antrópicas tienen bajo impacto sobre los MCE [9], lo cual ha llevado a afirmar que esas comunidades arrecifales contribuyen al equilibrio dinámico entre los procesos de restauración y degradación; en conjunto, esto constituye un proceso de vital importancia para la biología de la conservación de los arrecifes coralinos [10]. Frecuentemente se piensa que los corales zooxantelados, debido a sus simbiontes fotosintéticos, restringen su distribución a aguas someras caracterizadas por presentar una alta intensidad lumínica. Sin embargo, se ha encontrado que estos dinoflagelados están presentes a lo largo de toda la zona eufótica1 marina, y que pueden realizar metabolismo fotosintético hasta en sitios con intensidades de luz cercanas al 1% [11]. La presencia de vida fotótrofa a tales profundidades responde a adaptaciones morfológicas y ecológicas tanto del organismo simbionte como del coral hospedero, que en conjunto han favorecido la sobrevivencia de las poblaciones coralinas mesofóticas. ¿QUÉ ADAPTACIONES TIENEN LOS ARRECIFES MESOFÓTICOS Y SUS ZOOXANTELAS? Una de las adaptaciones observadas en el coral hospedero corresponde al desarrollo de morfologías planas (figura 3), caracterizadas por maximizar el área que captura la luz disponible [1]; esto se relaciona con que el ángulo, la orientación y las propiedades de reflectancia de la luz influyen en la cantidad de radiaZona donde se ha supuesto que no es posible la fotosíntesis debido a la escasez de luz. 1 ción fotosintéticamente activa que está disponible en el bentos [2]. Esta adaptación es un resultado de la plasticidad fenotípica, que se articula con un potencial cambio del genotipo de las zooxantelas a nivel de su fotofisiología, y conduce a mejorar la tasa fotosintética en condiciones de baja luminosidad [3]. No obstante, a pesar de esta disposición morfológica y de los reajustes fotofisiológicos realizados, se ha observado una notable reducción de la tasa de calcificación, como resultado de la baja tasa fotosintética del simbionte. Autores como Lesser, Slattery y Leichter [3], Bessell-Browne, Stat, Thomson y Clode [12] y Nir y colaboradores [13] han propuesto que para contrarrestar esta disminución, algunos corales mesofóticos cambian su estrategia trófica, de modo que incrementan la tasa de heterotrofía con respecto a la de autotrofía, y en diversos casos llegan a sobrevivir, en gran medida como resultado del consumo de zooplancton. Esto se relaciona con el fenómeno de mezcla de masas de agua y su gran aporte de concentraciones de nutrientes que favorecen esta estrategia [10]. En casos particulares también se ha visto que los cloroplastos cesan su actividad autotrófica en condiciones de oscuridad [14]. Por su parte, al hacer referencia específicamente a las adaptaciones de las zooxantelas simbiontes, se destaca que la mayoría de estas están enfocadas en cambios en la organización de su aparato fotosintético, lo cual tiene implicaciones en su función y conduce a procesos de fotoaclimatación a condiciones de baja radiación [3, 15, 16]. Un ejemplo de esto consiste en la concentración de clorofila en áreas específicas, lo cual maximiza la absorbancia de la luz disponible. Esta estrategia ha sido observada en las especies Montastraea cavernosa y Seriatopora hystrix [17]. Otra interesante adaptación consiste en la expresión que el coral hospedero hace de un sistema de proteínas, que incrementa la actividad fotosintética del simbionte en condiciones de baja disponibilidad de luz, al promover la transformación de longitudes de onda cortas en largas para que puedan ser absorbidas por los pigmentos de las zooxantelas. Esta adaptación es producto de procesos de coevolución, y se ha observado en la especie Leptoseris fragilis [3]. LOS CORALES NEGROS (ANTIPATHARIA): ACERCA DE ESTE HABITANTE DE LOS ARRECIFES MESOFÓTICOS Los corales del orden Antipatharia (figura 4), comúnmente conocidos como corales negros, tienen una longevidad que puede comprender desde décadas hasta milenios [18]. Aunque tradicionalmente se han utilizado caracteres morfológicos para resolver las relaciones filogenéticas entre los miembros del orden Antipatharia [19], recientes aproximaciones moleculares han probado ser muy útiles para este propósito [20] y han permitido clasificarlos como miembros de la subclase Hexacorallia [21], con 7 familias, 43 géneros y cerca de 235 especies [22, 23]. Tienen una distribución global [24], aunque constituyen una parte importante de la fauna bentónica en las zonas templadas Universidad de los Andes, Facultad de Ciencias 45 Figura 2. Corales escleractínios zooxantelados del género Scolymia, uno de los grupos más diversos en los arrecifes mesofóticos (Barú, Cartagena, 50-65 m) Fotos: Juan Armando Sánchez 46 Hipótesis, Apuntes científicos uniandinos, núm. 18, 2015 Figura 3. Coral tipo plato Agaricia grahamae, típico coral formador de arrecifes en áreas arrecifales (Bajo Trompadas, 50 m, Barú, Cartagena) Foto: Juan Armando Sánchez [25] y presentan una alta diversidad y abundancia en aguas tropicales y subtropicales [26, 27]. La forma de los corales negros puede variar entre árboles, plumas, arbustos, látigos y abanicos, y llegan a alcanzar alturas mayores a seis metros [21, 27]. A pesar de la importancia económica, religiosa y medicinal que han tenido estos corales para muchas culturas de todo el mundo, su biología y ecología han sido poco estudiadas [28]. No obstante, las nuevas tecnologías y el creciente número de expediciones marinas han facilitado la acumulación de datos nuevos sobre estos organismos [29]. Los corales negros son considerados organismos preciosos, y por tal motivo son utilizados en la fabricación de joyas. Por esto, su estado de conservación en algunos lugares está amenazado, e incluso se encuentran incluidos en tratados internacionales que prohíben su comercio y distribución [30], como la Convención sobre el Comercio Internacional de Especies Amenazadas de Fauna y Flora Silvestres (Cites, por sus siglas en inglés). La mayoría de las especies viven en sustratos duros, como crestas de rocas, cantos rodados y paredes. El rol que juegan en la ecología bentónica; y particularmente como hábitat para otras especies, aún es poco comprendido. Se han observado inverte- brados que viven entre los pólipos, incluidos cangrejos, estrellas, balanos, poliquetos y moluscos. Algunas colonias de corales negros proveen refugio a un amplio rango de invertebrados y peces; por lo tanto, su pérdida de cobertura podría también afectar los ensamblajes de invertebrados asociados [27]. La frágil estructura de las colonias del coral negro, su distribución en parches y su lento crecimiento hacen que este taxón sea vulnerable a los impactos antropogénicos, sobre todo a la sobreexplotación, y recientemente a las especies de corales invasoras, como el Carijoa riisei [31, 32]. Los corales negros son organismos cuya dieta se basa principalmente en el consumo de zooplancton [33]. Se cree que los organismos simbiontes (zooxantelas) no son esenciales para su nutrición. De esta forma, se asumió como regla general la carencia de dinoflagelados endosimbióticos, debido a la preferencia de estos corales por ambientes donde la poca luz disponible restringiría o impediría la realización de la fotosíntesis. A pesar de esto, algunos investigadores han encontrado la presencia del simbionte Symbiodinium en estos organismos, lo que pone de presente que tienen las características requeridas para el establecimiento de una simbiosis de este tipo. Asimismo, varios autores han reportado la presencia de Symbiodinium del clado Universidad de los Andes, Facultad de Ciencias 47 Figura 4. Corales negros (Antipatharia) de los arrecifes mesofóticos de Barú. Arriba (izquierda a derecha) Plumapathes pennacea y Rhipidipathes colombiana (especie endémica de Colombia). Abajo: Antipathes caribbeana Fotos: Juan Armando Sánchez G y C en algunos corales negros en Indonesia y Hawái, a una profundidad de 10 a 396 metros [29, 34]. Es evidente que las zooxantelas no constituyen la única estrategia de nutrición y supervivencia de los Antipatharia, pero para algunas subespecies o poblaciones quizás sí lo representen. Por esta razón, es fundamental realizar más estudios con un amplio rango, tanto geográfico y de especies, como de muestreo [23]. OSTREOBIUM: ¿FUENTE DE DIVERSIDAD Y ORGANISMOS SIMBIONTES EN LOS ARRECIFES MESOFÓTICOS? El género Ostreobium, caracterizado por ser uno de los más abundantes en todo el mundo, contiene las especies de algas endolíticas más comunes de los arrecifes coralinos del Atlántico y el Pacífico, y se considera el agente microerosionador más importante de esos ecosistemas, por participar en la disolución de partículas de carbonato de calcio en el agua que circunda a los arrecifes [35]. Asimismo, es extremista de poca luz, habita zonas de alta salinidad y se encuentra a grandes profundidades de la zona eufótica [36, 37]. Un aspecto que hace que Ostreobium sea responsable de gran parte de la bioerosión es que realiza este proceso en condiciones normales [38] o elevadas [39] de presión parcial de CO2. 48 Hipótesis, Apuntes científicos uniandinos, núm. 18, 2015 Para esto es fundamental que dicho aumento no genere efectos sobre la tasa fotosintética del organismo [40]. Por otra parte, sus especies tienen un amplio rango de morfologías y tamaños y son un buen indicador del límite fótico, debido a su alta tolerancia a bajas disponibilidades de luz [41]. De igual forma, presentan amplia distribución; este es el caso de Ostreobium quekettii, especie que, como consecuencia de su alta tolerancia a los gradientes de temperatura, se encuentra desde el Ártico [42] hasta los trópicos [43], e incluso se ha reportado en lugares tan diversos como el mar Rojo [44]. En el contexto colombiano también existe el reporte de Ostreobium quekettii, como único registro del género, en el Atlántico [45]. Ostreobium se asocia directamente con los esqueletos de los corales, en general vive dentro del esqueleto [46], entre 5 y 30 mm del exterior [47], y entre las comunidades de algas endolíticas, domina las zonas más cercanas al coral. No recibe mucha luz, pues la mayoría es captada por las zooxantelas, pero aun así optimiza su captación al recibir longitudes de onda que no son absorbidas por las zooxantelas [48]. De hecho, puede ser fotoinhibida por altas concentraciones de luz. Adicionalmente, tiene adaptaciones como unidades fotosintéticas alargadas y aumento de la cantidad de clorofila, que le permiten capturar luz a unas menores intensidades lumínicas [49]. Figura 5. Coral tipo plato con manchas oscuras correspondientes a altas densidades de algas endolíticas del género Ostreobium (Bajo Octubre Rojo, Barú, Cartagena, 40-55 m). Arriba: Agaricia undata. Abajo: Agaricia fragilis Fotos: Juan Armando Sánchez Existe evidencia que apoya la existencia de interacciones mutualistas entre diversas especies del género Ostreobium y los corales; estas se fundamentan en la capacidad de las algas de proveer fuentes de carbono a los corales, cuando estos experimentan eventos de blaqueamiento por altas temperaturas. Además, el proceso parece ser altamente específico en cuanto a especie y/o ubicación [50]. Las algas de este género también tienen importancia durante los cambios de fase, ya que son dominantes en el inicio de la sucesión ecológica, tras un evento de blanqueamiento [51]. También se ha observado que se asocian con esponjas en el Caribe y el Mediterráneo [52]. Este género tiene una alta diversidad genética, determinada por la especie de coral y la profundidad a la que se encuentra [53]. Es así como en los últimos años, las técnicas moleculares han logrado revolucionar la taxonomía de las algas y están permitiendo descubrir nuevas especies [54], evidenciándose de esta forma un incremento en el registro de especies crípticas de algas [55]. Estas investigaciones se han favorecido con el uso de los sedimientos de ambientes arrecifales para el estudio de la presencia y diversidad de Ostreobium [56]. Análisis moleculares muestran que el género Ostreobium es genéticamente diferenciado de sus parientes más cercanos; esto hace que sus especies pertenezcan a su propio suborden, conocido como Ostreobidineae [57]. Recientes estudios demuestran que el género Ostreobium puede llegar a ser igual o más diverso que los corales con los que interactúa. Al igual que ocurre con la investigación de zooxantelas, Ostreobium requiere de mayores estudios a nivel genético, con el fin de evidenciar casos de especies crípticas o incorrectas determinaciones taxonómicas. Frente a este panorama, es fundamental continuar con el análisis poblacional mediante el grandiente de luz, profundidad y disponibilidad de nutrientes, para así incrementar el conocimiento ecológico disponible acerca de este género. Adicionalmente, es fundamental continuar investigando sobre Ostreobium en diferentes especies de coral (figura 5), con el fin de evidenciar posibles asociaciones específicas, tal y como ocurre en la interacción coral-zooxantela. CONCLUSIONES Debido a su importancia ecológica y económica, la comprensión de los aspectos clave de los arrecifes mesofóticos (ecología, fisiología y diversidad de simbiontes, entre otros) constituye un área del conocimiento que requiere la inversión prioritaria de esfuerzos económicos e investigativos para su manejo y conservación. Por ahora, la actual evidencia científica disponible sugiere que los corales mesofóticos (por ejemplo, figura 6) y sus simbiontes no presentan una única estrategia de adaptación Universidad de los Andes, Facultad de Ciencias 49 Figura 6. Octocoral tipo lira, Ellisella schmitti, uno de los corales más abundantes en los arrecifes mesofóticos del mar Caribe (Octubre Rojo, Barú, Cartagena, 65 m) Foto: Juan Armando Sánchez evolutivamente exitosa, y está por determinarse si la presencia de simbiontes es inherente a todas las especies de Antipatharia. Adicionalmente, es necesario evaluar la importancia de las algas endolíticas del género Ostreobium como posibles simbiontes de los corales de arrecifes mesofóticos, que contribuyen a que respondan a los efectos que tiene el cambio climático sobre sus endosimbiontes dinoflagelados. De esta manera, es funda- 50 Hipótesis, Apuntes científicos uniandinos, núm. 18, 2015 mental promover la investigación en los arrecifes mesofóticos para incrementar el conocimiento disponible. Afortunadamente, el buceo técnico es cada vez más accesible con técnicas como el trimix (aire, oxígeno y helio) y los equipos recirculadores CCR (por sus siglas en inglés, closed circuit rebreather), con los cuales se está haciendo exploración dentro de límites seguros hasta los 120 m (figura 7). • Figura 7. Buzos con equipo técnico CCR (Megalodon-InnerSpaceSystems- grupo Biommar, Uniandes), con el cual se han realizado las primeras exploraciones de los arrecifes mesofóticos de Colombia hasta los 100 m, gracias a la financiación de Colciencias y la Vicerrectoría de Investigaciones de Uniandes Fotos: Julio Andrade y Juan Armando Sánchez Universidad de los Andes, Facultad de Ciencias 51 REFERENCIAS [1] Olson JB, Kellogg, CA. Microbial ecology of corals, sponges, and algae in mesophotic coral environments. FEMS Microbiology Ecology 2010; 73(1): 17-30. [2] Kahng, SE, Garcia-Sais JR, Spalding HL, Brokovich E, Wagner D, Weil E, Hinderstein L, Toonen RJ. Community ecology of mesophotic coral reef ecosystems. Coral Reefs 2010; 29(2): 255-275. [3] Lesser MP, Slattery M, Leichter JJ. Ecology of mesophotic coral reefs. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 2009; 375: 1-8. [4] Kahng SE, Kelley CD. Vertical zonation of megabenthic taxa on a deep photosynthetic reef (50-140 m) in the Au’au Channel, Hawaii. Coral Reefs 2007; 26(3): 679-687. [5] Van Oppen MJ, Bongaerts P, Underwood JN, Peplow LM, Cooper TF. The role of deep reefs in shallow reef recovery: an assessment of vertical connectivity in a brooding coral from west and east Australia. Molecular Ecology 2011; 20(8): 1647-1660. [6] Cooper TF, Ulstrup KE, Dandan SS, Heyward AJ, Kühl M, Muirhead A et al. Niche specialization of reef-building corals in the mesophotic zone: metabolic trade-offs between divergent Symbiodinium types. Proceedings of the Royal Society of London B: Biological Sciences 2010; 278: 1840-1850. [7] Glynn PW. Coral reef bleaching: facts, hypotheses and implications. Global Change Biology 1996; 2(6): 495-509. [8] Bongaerts P, Frade P, Ogier J, Hay K, van Bleijswijk J, Englebert N et al. Sharing the slope: depth partitioning of agariciid corals and associated Symbiodinium across shallow and mesophotic habitats (2-60m) on a Caribbean reef. BMC Evolutionary Biology 2013; 13(205): 1-14. [9] Bak RPM, Nieuwland G, Meesters E. Coral reef crisis in deep and shallow reefs: 30 years of constancy and change in reefs of Curaçao and Bonaire. Coral Reefs 2005; 24(3): 475-479. [10] Bongaerts P, Ridgway T, Sampayo EM, Hoegh-Guldberg O. Assessing the “deep reef refugia” hypothesis: focus on Caribbean reefs. Coral Reefs 2010; 29(2): 309-327. [11] Chan Y, Pochon X, Fisher M, Wagner D, Concepcion G, Kahng S et al. Generalist dinoflagellate endosymbionts and host genotype diversity detected from mesophotic (67-100 m depths) coral Leptoseris. BMC Ecology 2009; 9(21): 1-7. [12] Bessell-Browne P, Stat M, Thomson D, Clode P. Coscinaraea marshae corals that have survived prolonged bleaching exhibit signs of increased heterotrophic feeding. Coral Reefs 2014; 33(3): 795-804. [13] Nir O, Gruber DF, Shemesh E, Glasser E, Tchernov D. Seasonal Mesophotic Coral Bleaching of Stylophora pistillatain the Northern Red Sea. PLoS One 2014; 9(1): e84968. [14] Grzymski J, Schofield OM, Falkowski PG, Bernhard JM. The function of plastids in the deep-sea benthic foraminifer, Nonionella stella. Limnology and Oceanography 2002; 47(6): 1569-1580. [15] Titlyanov EA, Titlyanova TV, Yamazato K, Van Woesik R. Photo-acclimation dynamics of the coral Stylophora pistillata to 52 Hipótesis, Apuntes científicos uniandinos, núm. 18, 2015 [16] [17] [18] [19] [20] [21] [22] [23] [24] [25] [26] [27] [28] [29] low and extremely low light. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 2001; 263(2): 211-225. Fit WK, Cook CB. Photoacclimation and the effect of the symbiotic environment on the photosynthetic response of symbiotic dinoflagellates in the tropical marine hydroid Myrionema amboinense. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 2001; 256(1): 15-31. Kahng SE, Copus JM, Wagner D. Recent advances in the ecology of mesophotic coral ecosystems (MCE). Current Opinion in Environmental Sustainability 2014; 7: 72-81. Carreiro-Silva M, Andrews AH, Braga-Henriques A, de Matos V, Porteiro FM, Santos RS. Variability in growth rates of long-lived black coral Leiopathes sp. from the Azores. Marine Ecology Progress Series 2013; 473: 189-199. Opresko DM. Revision of the Antipatharia (Cnidaria: Anthozoa). Part I. Establishment of a new family, Myriopathidae. Zoologische Mededelingen Leiden 2001; 75: 343-370 . Lapian HFN, Barucca M, Bavestrello G, Biscotti MA, Bo M, Canapa A et al. A systematic study of some Black Corals species (Antipatharia, Hexacorallia) based on rDNA internal transcribed spacers sequences. Marine Biology 2006; 151(2): 785-792. Brugler MR, France SC. The complete mitochondrial genome of the black coral Chrysopathes formosa (Cnidaria: Anthozoa: Antipatharia) supports classification of antipatharians within the subclass Hexacorallia. Molecular phylogenetics and evolution 2007; 42(3): 776-788. Cairns SD. Deep-Water Corals: An overview with special reference to diversity and distribution of deep-water scleractinian corals. Bulletin of Marine Science 2007; 81(3): 311-322. Wagner D, Luck DG, Toonen RJ. Chapter Two - The biology and ecology of black corals (Cnidaria: Anthozoa: Hexacorallia: Antipatharia). In: Lesser M, ed. Advances in Marine Biology. Durham: Academic Press; 2012. Grigg RW. Ecological Studies of Black Coral in Hawaii. Pacific Science 1965; XIX: 244-260. Parker NR, Mladenov PV, Grange KR. Reproductive biology of the antipatharian black coral Antipathes fiordensis in Doubtful Sound, Fiordland, New Zealand. Marine Biology 1997; 130(1): 11-22. Tazioli S, Bo M, Boyer M, Rotinsulu H, Bavestrello G. Ecological Observations of Some Common Antipatharian Corals in the Marine Park of Bunaken (North Sulawesi, Indonesia). Zoological Studies 2007; 46(2): 227-241. Love MS, Yoklavich MM, Black BA, Andrews AH. Age of black coral (Antipathes dendrochristos) colonies, with notes on associated invertebrate species. Bulletin of Marine Science 2007; 80(2): 391-400. Bo M, Tazioli S, Spanò N, Bavestrello G. Antipathella subpinnata (Antipatharia, Myriopathidae) in Italian seas. Italian Journal of Zoology 2008; 75(2): 185-195. Bo M, Baker A, Gaino E, Wirshing H, Scoccia F, Bavestrello G. First description of algal mutualistic endosymbiosis in a black [30] [31] [32] [33] [34] [35] [36] [37] [38] [39] [40] [41] [42] [43] coral (Anthozoa: Antipatharia). Marine Ecology Progress Series 2011; 435: 1-11. Tsounis G, Rossi S, Grigg R, Santangelo G, Bramanti L, Gili JP. Chapter 3. The exploitation and conservation of precious corals. In: Gibson RN, Atkinson RJA, Gordon DM, eds. Oceanography and Marine Biology: An Annual Review. Boca Raton: CRC Press; 2010. Grigg RW. Invasion of a deep black coral bed by an alien species, Carijoa riisei, off Maiu, Hawaii 2003; 22(2): 121-122. Boland RC, Parrish FA. A description of fish assemblages in the black coral beds off Lahaina, Maui, Hawaii. Pacific Science 2005; 59(3): 411-420. Carlier A, Le Guilloux E, Olu K, Sarrazin J, Mastrototaro F, Taviani M et al. Trophic relationships in a deep Mediterranean cold-water coral bank (Santa María di Leuca, Ionian Sea). Marine Ecology Progress Series 2009; 397: 125-137. Wagner D, Pochon X, Irwin L, Toonen RJ, Gates RD. Azooxanthellate? Most Hawaiian black corals contain Symbiodinium. Proceedings of the Royal Society of London B: Biological Sciences 2011; 278(1710): 1323-1328. Tribollet, A. The boring microflora in modern coral reef ecosystems: a review of its roles. En: Wisshak M, Tapanila L, eds. Current Developments in Bioerosion. Heidelberg: Springer-Verlag Berlin Heidelberg; 2008. Wisshak M. Microbioerosion. En: Knaust D, Bromley R, eds. Trace fossils as indicators of sedimentary environments. Amsterdam: Elservier; 2012. Walker SE, Parsons-Hubbard K, Richardson-White S, Brett C, Powell E. Alpha and beta diversity of encrusting foraminifera that recruit to long-term experiments along a carbonate platform-to-slope gradient: Paleoecological and paleoenvironmental implications. Palaeogeography, Palaeoclimatology, Palaeoecology 2011; 312(3-4): 325-349. Sartoretto S. Bioérosion des concrétions coralligènes de Méditerranée par les organismes perforants: essai de quantification des processus. Comptes Rendus de l’Académie des Sciences-Series II A-Earth and Planetary Science1998; 327(12), 839-844. Reyes-Nivia C, Díaz-Pulido G, Kline D, Guldberg OH, Dove S. Ocean acidification and warming scenarios increase microbioerosion of coral skeletons. Global change biology 2013; 19(6): 1919-1929. Tribollet A, Atkinson MJ, Christopher L. Effects of elevated pCO2 on epilithic and endolithic metabolism of reef carbonates. Global Change Biology 2006; 12(11): 2200-2208. Heindel K, Wisshak M, Westphal H. Microbioerosion in Tahitian reefs: a record of environmental change during the last deglacial sea-level rise (IODP 310). Lethaia 2009; 42(3): 322-340. Freiwald A, Henrich R. Reefal coralline algal build-ups within the Arctic Circle: morphology and sedimentary dynamics under extreme environmental seasonality. Sedimentology 1994; 41(5): 963-984. Wisshak M, Gektidis M, Freiwald A, Lundälv T. Bioerosion along a bathymetric gradient in a cold-temperate setting (Koster- [44] [45] [46] [47] [48] [49] [50] [51] [52] [53] [54] [55] [56] [57] fjord, SW Sweden): an experimental study. Facies 2005; 51(14): 93-117. Fricke HW, Knauer B. Diversity and spatial pattern of coral communities in the Red Sea upper twilight zone. Oecologia 1986; 71(1): 29-37. Díaz-Pulido G, Díaz-Ruiz M. Diversity of benthic marine algae of the Colombian Atlantic. Biota Colombiana 2003; 4(2): 203246. Van den Hoek C, Cortel-Breeman AM, Wanders JBW. Algal zonation in the fringing coral reef of Curaçao, Netherlands Antilles, in relation to zonation of corals and gorgonians. Aquatic Botany 1975; 1: 269-308. Ralph PJ, Larkum AWD, Kühl M. Photobiology of endolithic microorganisms in living coral skeletons: 1. Pigmentation, spectral reflectance and variable chlorophyll fluorescence analysis of endoliths in the massive corals Cyphastrea serailia, Porites lutea and Goniastrea australensis. Marine Biology 2007; 152(2): 395-404. Verbruggen H, Tribollet A. Boring algae. Current Biology 2011; 21(21): R876-R877. Hannon JS, Meyer DL. Microendolithic structures from the Fort Payne Formation (lower Mississippian), Kentucky and Tennessee: Implications for the paleoenvironment of carbonate mudmounds. Palaeogeography, Palaeoclimatology, Palaeoecology 2014; 393: 20-29. Gates RD, Ainsworth TD. The nature and taxonomic composition of coral symbiomes as drivers of performance limits in scleractinian corals. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 2011; 408(1-2): 94-101. Díaz-Pulido G, McCook LJ. The fate of bleached corals: Patterns and dynamics of algal recruitment. Marine Ecology Progress Series 2002; 232: 115-128. Lemloh ML, Fromont J, Brümmer F, Usher KM. Diversity and abundance of photosynthetic sponges in temperate Western Australia. BMC Ecology 2009; 9(4): 1-13. Gutner-Hoch E, Fine M. Genotypic diversity and distribution of Ostreobium quekettii within scleractinian corals. Coral Reefs 2011; 30(3): 643-650. Lang M, Marinelli RL, Roberts SJ, Taylor PR. Research faciliated by scuba: Introduction. In: Lang M, Marinelli RL, Roberts SJ, Taylor PR, eds. Research and Discoveries: The Revolution of Science through Scuba. Washington: Smithsonian Institution Scholarly Press; 2013. De Clerck O, Guiry MD, Leliaert F, Samyn Y, Verbruggen H. Algal taxonomy: a road to nowhere? Journal of Phycology 2013; 49(2): 215-225. Perry C. Grain susceptibility to the effects of microboring: implications for the preservation of skeletal carbonates. Sedimentology 1998; 45(1): 39-51. Verbruggen H, Ashworth M, LoDuca ST, Vlaeminck C, Cocquyt E, Sauvage T et al. A multi-locus time-calibrated phylogeny of the siphonous green algae. Molecular Phylogenetics and Evolution 2009; 50(3): 642-653. Universidad de los Andes, Facultad de Ciencias 53
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